I Curso de Verão em Oncologia Experimental |
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O I Curso de Verão em Oncologia Experimental é um evento organizado por
Este curso tem como objetivo propiciar aos alunos de graduação o ocntato Outras informações: http://pgoncologia.inca.gov.br/ Cursos Práticos 1. Técnicas Experimentais para o Estudo da Expressão Gênica O curso terá como base o estudo da expressão gênica utilizando um fator de transcrição. Os alunos trabalharão com processos básicos de biologia molecular (cultura de bactérias e manipulação de DNA), na construção de um vetor plasmidial contendo o gene do fator de transcrição a ser estudado. Além disso, serão avaliadas a funcionalidade da construção e a atividade do fator com diversas técnicas de biologia celular: transfecção do vetor plasmidial em células eucarióticas; análise de expressão do gene clonado por citometria de fluxo e western blot; ativação e translocação nuclear do fator de transcrição por microscopia de fluorescência e análise da ativação transcricional do fator por ensaio de gene repórter (luciferase). Aulas teóricas serão ministradas para explicar os métodos utilizados e discutir as estratégias de abordagem usadas atualmente no estudo da expressão gênica. Pesquisador responsável: Dr. João Viola Pós-graduandos: André Cruz, Douglas Faget e Giuliana Mognol 2. Diagnóstico Molecular e Aconselhamento Genético no Câncer Hereditário O curso visa o aprendizado de metodologias utilizadas para a detecção de alterações genéticas relacionadas ao surgimento dos principais tipos de câncer hereditário. As abordagens utilizadas serão: extração de DNA de sangue periférico e de amostras tumorais; reação em cadeia da polimerase (PCR); eletroforese em gel de agarose; seqüenciamento de DNA; análise de seqüências através dos programas Chromas Pro e Sequencher ealinhamento de seqüências através do programa BLAST; e FISH (fluorescent in situhybridization ) em suspensões celulares feitas a partir de sangue periférico e em amostrastumorais. Pesquisador responsável: Dr. Héctor Seuanéz Pós-graduandos: Adriana Reis, Fernanda Aguiar e Raquel da Hora 3. Mecanismos Epigenéticos de Regulação Gênica Os mecanismos epigenéticos de regulação gênica têm sido estudados extensivamente nos últimos tempos, principalmente em tumores. Isso porque esses mecanismos podem levar à repressão de genes importantes, como os genes supressores de tumor e à ativação de oncogenes. Além disso, por serem reversíveis, as alterações epigenéticas têm sido apontadas como possível alvo para terapias anti-tumorais. O câncer de esôfago é um dos 10 tipos de tumor mais freqüentes e letais no Brasil e no mundo, porém existem poucos estudos sobre os mecanismos epigenéticos envolvidos no desenvolvimento desta neoplasia. Dentro deste contexto, nosso grupo vem estudando as alterações epigenéticas encontradas no carcinoma epidermóide de esôfago. O curso visa apresentar aos alunos metodologias que permitam avaliar os mecanismos epigenéticos envolvidos na regulação dos genes que participam do ciclo celular. As abordagens utilizadas serão: avaliação da expressão do mRNA por PCR quatitativo dos genes p14ARF e p16INK4a; tratamento com bissulfito de sódio e PCR; clonagem de produto de PCR; extraçãode DNA plasmidial e seqüenciamento de DNA. Pesquisador responsável: Dr. Luis Felipe Ribeiro Pós-graduandos: Sheila Coelho e Tatiana Simão 4. Abordagens Multidisciplinares no Estudo das Neoplasias Hematológicas Esse curso tem como objetivo principal apresentar uma visão integrada do campo de estudo das neoplasias hematológicas e suas principais abordagens experimentais. Serão discutidos conceitos sobre a hematopoiese normal e transformação maligna; neoplasias hematológicas mielóides e linfóides: marcadores celulares e moleculares; alterações genéticas nas leucemias (mutações, translocações, alterações do número de cópias, fatores epigenéticos, haploinsuficiência); fundamentos do tratamento e monitorização molecular das leucemias. Serão estudados a leucemia mielóide crônica e os linfomas B como modelos experimentais, com abordagens metodológicas que incluirão: extração e avaliação de ácidos nucléicos (RNA e DNA); estudo dos rearranjos de genes de imunoglobulina e receptor de células T como marcadores de clonalidade; estudo de translocações e mutações por reação em cadeia da polimerase (PCR) e seqüenciamento; quantificação da carga tumoral (BCR-ABL) e de padrões de expressão gênica (BCL6 e ciclinas) por PCR emTempo Real; citometria de fluxo; técnicas de imunolocalização celular de proteínas e RNA: imunohistoquímica e hibridização in situ (ISH), em preparações de “tissue microarray”.Pesquisador responsável: Dra. Rocio Hassan Pós-graduandos: Vanesa Scholl, Marta Nogueira, Mario Barros e Carolina Minnicelli 5. Terapia Gênica: Aplicações Práticas no Laboratório Esse curso tem como objetivo introduzir o aluno aos princípios da terapia gênica. As aulas teóricas irão abordar aspectos relevantes do histórico e da biologia básica da terapia gênica, assim como uma visão geral das aplicações práticas e clínicas desta metodologia. Nas aulas práticas, será enfatizado todo o processo de produção dos vetores retrovirais e lentivirais, as diferenças entre estes dois tipos de vírus e o processo de pseudotipagem dos vetores. Também serão avaliadas as diversas modalidades desta metodologia como a expressão de transgene, silenciamento gênico e o sistema indutível de expressão gênica. Para finalizar, serão realizados ensaios celulares demonstrando algumas aplicações práticas desta metodologia. Pesquisador responsável: Dr. Martin Bonamino Pós-graduandos: Ana Carolina Leal e Leonardo Chicaybam 6. Avaliação dos Mecanismos de Morte Celular Programada Induzida por Quimioterápicos Esse curso visa o aprendizado das principais metodologias utilizadas na avaliação da morte celular por apoptose, vias de sinalização relacionadas e a regulação do processo após indução de morte com quimioterápicos em linhagens tumorais. Linhagens celulares tumorais com diferentes características serão tratadas com quimioterápicos e o processo de morte celular induzido será caracterizado. Diversos aspectos da apoptose serão avaliados por citometria de fluxo. Será avaliada por western blot a ativação de caspases através da clivagem de substratos, bem como a morfologia nuclear das células apoptóticas por microscopia de fluorescência e a fragmentação internucleossomal de DNA em gel de agarose. A regulação do processo será estudada por PCR em tempo real de genes envolvidos no processo de morte celular. Cada abordagem será explicada e comparada com outras técnicas disponíveis. Pesquisador responsável: Dra. Cinthya Sternberg Pós-graduandos: Érika Carvalho, João Laclette e Mauricio Caetano 7. Aplicação de Técnicas Celulares e Moleculares ao Estudo da Resistência a Múltiplas Drogas O curso tem como objetivo estudar os aspectos celulares e moleculares envolvidos com o fenótipo de resistência a múltiplas drogas (MDR) nas neoplasias. Nas aulas práticas, os alunos farão cultura de linhagens leucêmicas e utilizarão amostras sanguíneas de indivíduos saudáveis, separadas por gradiente de densidade. A detecção da expressão e funcionalidade das proteínas MDR será analisada por citometria de fluxo e o envolvimento dessas proteínas com a resistência será avaliado através do ensaio de citotoxicidade MTT. A fim de verificar a expressão de proteínas relacionadas à resistência à apoptose, serão realizados imunocitoquímica e Western blot, no qual os alunos farão extração de proteínas e dosagem pelo Método Lowry. Pesquisador responsável: Dra. Raquel Maia Pós-graduandos: Ana Carolina Ferreira, Gabriela Nestal e Paloma Souza 8. Biomarcadores em câncer O curso visa o aprendizado de metodologias utilizadas na identificação e validação de biomarcadores envolvidos no diagnóstico e tratamento oncológico. Com esse objetivo, o curso apresentará uma visão geral sobre os biomarcadores, enfatizando seu conceito e importância no diagnóstico e tratamento do câncer, bem como a importância dos cuidados com a coleta, preparo e conservação das amostras. O curso contará com uma parte teórica inicial sobre técnicas utilizadas no rastreamento de biomarcadores, onde serão discutidas técnicas como microarray e proteômica. Após serão ministradas aulas práticas sobre asalterações genéticas como biomarcadores, com foco na análise de instabilidade de microsatélite, aulas práticas sobre validação dos biomarcadores, com foco no PCR em tempo real e na imuno-histoquímica, como uma técnica utilizada no diagnóstico clínico. O curso contará ainda com uma aula teórica final onde será apresentada uma visão geral sobre os biomarcadores já estabelecidos e que se traduzem na prática clínica. Pesquisador responsável: Dr. Carlos Gil Pós-graduandos: Danielle Braggio, Luciene Schluckebier e Marcus Valadão |
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